快速导航

毕业论文定制

关于我们

我们是一家专业提供高质量代做毕业设计的网站。2002年成立至今为众多客户提供大量毕业设计、论文定制等服务，赢得众多客户好评，因为专注，所以专业。写作老师大部分由全国211/958等高校的博士及硕士生设计，执笔，目前已为5000余位客户解决了论文写作的难题。秉承以用户为中心，为用户创造价值的理念，我站拥有无缝对接的售后服务体系，代做毕业设计完成后有专业的老师进行一对一修改与完善，对有答辩需求的同学进行一对一的辅导,为你顺利毕业保驾护航

代做毕业设计

常见问题

尸体与活体供肾移植术前微量淋巴细胞毒交叉配型结果及与肾移植效

添加时间：2016/10/20 来源：未知作者：admin

不管是对于尸体供肾移植还是活体供肾移植，CDC交叉配型实验结合 PRA检测，对选择合适的受者、预防排斥反应及并发症的发生以及改善移植物存活状况等方面都有重要意义。
以下为本篇论文正文：

　　摘要回顾性分析同期完成的尸体与活体供肾移植术前微量淋巴细胞毒（CDC）交叉配型实验检测结果与术后临床效果的内在关系。尸体供肾移植组术前 CDC检测结果相对于活体供肾移植组显着增高（P<005），术后受者死亡/肾丢失、排斥反应/延迟恢复发生率，尸体供肾移植组显着高于活体供肾移植组（P<005）。移植后在出现受者死亡/肾丢失、排斥反应/延迟恢复以及肺部感染这些不良事件时，尸体供肾移植组 CDC检测结果在 9%以上或者活体供肾移植组在 4%以上的占比均显着高于未发生临床不良事件，两种不同来源的肾脏移植都应尽可能的选择术前 CDC检测结果偏低的受者进行移植。

　　关键词活体供肾；尸体供肾；不良事件；交叉配型；肾移植

　　在临床器官移植领域尤其是在肾移植手术前，补体依赖的微量淋巴细胞毒（complementdependentcytotoxicity,CDC）交叉配型实验一直都是作为移植前预防排斥反应发生的重要和必需的实验[1-2].随着新型免疫抑制剂的应用以及器官移植技术的不断完善，同种异体肾移植已成为治疗终末期肾脏疾病患者的最佳替代治疗方法[3-4].目前临床医师均普遍重视在术前针对受者体内预先存在的抗供者人类白细胞抗原（humanleukocyteantigen,HLA）的 HLA抗体做检测以减少术后排斥反应及并发症的发生[5-6],而移植前供受者间交叉配型实验可检测受者血清中特异性针对供者 HLA抗原的同种抗体[7].笔者收集了 137例初次肾移植患者的临床资料，对两种供体来源的移植术前以及术后与临床疗效相关的 CDC实验检测结果进行对照研究，进一步探讨受者在肾移植前做 CDC实验检测的临床意义，现报道如下。

　　1 材料与方法

　　1.1 研究对象收集安徽医科大学第一附属医院泌尿外科 2008年 1月 ~2016年 2月首次行肾脏移植患者的临床资料。尸体供肾移植受者共 53例，均明确诊断为慢性肾功能不全尿毒症期，其中男 37例，女 16例，18~58（3923±1040）岁，ABO血型相同 48例，相容 5例，术前群体反应性抗体（panelreactiveantibodies,PRA）检测均为阴性；活体供肾移植受者共 84例，同样都明确诊断为慢性肾功能不全尿毒症期，其中男 60例，女 24例，16~56（3275±888）岁，ABO血型相同 61例，相容 23例，术前PRA检测同样均为阴性。活体供肾移植供者 84例均为亲属，其中血缘亲属供肾 79例（父母供给子女64例，子女供给父母 1例，姑姑婶婶供给侄子 2例，兄弟姐妹供肾 12例），非血缘亲属供肾 5例（丈夫供给妻子 1例，妻子供给丈夫 4例），均系自愿捐肾并严格遵守《人体器官移植条例》相关要求。

　　1.2 CDC交叉配型实验结果的测定采用 FicollHypaque密度梯度离心法，从活体供肾者外周血或尸体供肾者脾脏分离出淋巴细胞，用 PBS调节细胞浓度至（2~25）×106/ml（每孔约 2000个细胞）备用。在 Terasakiblank板上将每排第 1孔设为细胞对照，第 2孔设为补体对照，第 3孔为血清对照，第4孔为阳性对照，第 5孔为样本孔，每孔加无菌矿物油 10μl和供者淋巴细胞 1μl,另外还需加入 1μlPBS至第 1孔（细胞对照），加 3μl兔补体至第 2孔（补体对照），加 1μl受者血清至第 3孔（血清对照），加 1μl阳性血清和 3μl兔补体至第 4孔对照），加 1μl受者血清和 3μl兔补体至第 5孔（样本孔）中，轻轻震荡摇匀，恒温（37℃）孵育 60min后每孔加入荧光终止剂 5μl,室温放置 15min后于倒置相差荧光显微镜下计数 200个淋巴细胞中死亡的淋巴细胞数，结果以百分数（%）表示。

　　1.3 统计学处理采用 SPSS130统计软件进行分析，计量资料以珋x±s表示，采用配对 t检验，方差不齐时采用秩和检验，计数资料以例数及百分数表示，采用 χ2检验，P<005表示差异有统计学意义。

　　2 结果

　　2.1 受体基本临床资料及术前CDC实验结果比较

　　尸体供肾移植组患者年龄以及术前 CDC实验结果显着高于活体供肾移植组（P<005），见表 1.两种供体来源的移植术前 CDC实验显微镜下可见：死淋巴细胞体积稍大，在荧光染色剂的作用下呈红色，活淋巴细胞体积偏小，在荧光染色剂的作用下呈绿色，见图 1.

　　2.2 两种供体来源的移植术后一般临床效果的比较

　　尸体供肾移植组与活体供肾移植组在术后未发生临床不良事件率上无显着性差异；尸体供肾移植组在术后 1年内受者死亡/肾丢失率、排斥反应/延迟恢复发生率上显着高于活体供肾移植组（P<005），而在肺部感染发生率上，尸体供肾移植组要低于活体供肾移植组，但差异无统计学意义，见表2.

　　2.3 与临床效果相关的术前

　　CDC实验结果比较移植后活体供肾移植组在发生受者死亡/肾丢失时其术前 CDC检查结果显着高于未发生临床不良事件的术前 CDC检测结果（P<005），除此之外，两组移植在发生临床不良事件时其术前 CDC检查结果与未发生临床不良事件的术前 CDC检测结果比较均无显着性增加，见表 3.但移植后在发生各种不良事件时尸体供肾移植组术前 CDC实验检测结果在 9%以上或者活体供肾移植组术前 CDC实验检测结果在 4%以上的占比与未发生临床不良事件相比均显着增高，见表 4.

　　3 讨论

　　近年来国内外医学工作者均将术前 PRA检测阴性者作为移植受者的首选[8-9],因此本次调查研究旨在探讨在 PRA检测为阴性的情况下，不同来源的肾脏移植，术前 CDC交叉配型结果的差异及与术后不良事件内在的关系，为临床医师在术前选择更加合适的供体提供意见和帮助。结果显示尸体供肾移植组 CDC实验结果显着高于活体供肾移植组，这一方面可能因为本研究中活体供肾移植组供受者间94%以上有 3代以内血缘关系，其体内存在的相同或部分相同的遗传染色体导致供受体间有更好的组织相容性；而另一方面与前文列出的排斥反应/延迟恢复、1年内受者死亡/肾丢失的发生率相结合充分说明了 CDC结果越高其术后发生急慢性排斥反应的可能性也就越大。大量研究[4,10-11]表明肾移植术后的不良事件主要有患者死亡、移植物失功、移植物丢失、急慢性排斥反应、肾功能延迟恢复以及并发的各种感染。而在术后感染中危害程度最大的、病死率最高的即为肺部感染[12].因此，笔者本次研究将移植手术后的不良事件归为 3大类，通过对这些临床资料的回顾性分析显示虽然两种来源的供肾移植在未发生临床不良事件率上差异无统计学意义，但在 1年内受者死亡/肾丢失、排斥反应/延迟恢复的发生率上，尸体供肾移植组显着高于活体供肾移植组，然而在肺部感染发生率上活体供肾移植组反而略高于尸体供肾移植组，这可能与安徽医科大学第一附属医院活体供肾移植短期内死亡率低、围手术期大量免疫抑制剂的应用以及尸体供肾移植样本数总体偏小有关。

　　CDC交叉配型实验是最早的也是最经典的临床器官移植领域实验技术，不同于 PRA检测，它是特异性的针对供者体内抗体，实验简单易行。本研究显示，不管是对于尸体供肾移植还是活体供肾移植，CDC交叉配型实验结合 PRA检测，对选择合适的受者、预防排斥反应及并发症的发生以及改善移植物存活状况等方面都有重要意义。

　　参考文献

　　[1] KuteVB,VanikarAV,GumberM R,etal.Kidneytransplantation with positive complement-dependent lymphocytotoxicity crossmatch with negative flow crossmatching and luminexx donorspecific antibodies[J].RenFail,2013,35（7）：1027-30.

　　[2] 肖露露，易燕，叶欣，等。补体依赖 -流式细胞术 -淋巴细胞毒交叉配型实验方法的研究 [J].中华泌尿外科杂志，2006,4（27）：79-82.

　　[3] PanGH,ChenZ,XuL,et al.Low-dose tacrolimus combined with donor-derived mesenchymal stem cells after renal transplantation:a prospective, non-randomized study[J].Oncotarget,2016,7（11）：12089-101.

　　[4] 梁涛，蔡明，李州利，等。活体供肾与尸体供肾：1个器官移植中心 2年 65:169例肾移植效果比较[J].中国组织工程研究与临床康复，2010,14（31）：5717-20

　　[5PirimI,SoyozM,AynaTK,et al.De novo produced anti-human leukocyte antigen antibodies relation to alloimmunity in patients with chronic renal failure[J].Genet Test Mol Biomarkers,2015,19（6）：335-8.

　　[6]Konvalinka A,Tinckam K.Utility of HLA antibody testing in kidney transplantation[J].J Am Soc Nephrol,2015,26（7）：1489-502.

　　[7] Schlaf G,Pollok-KoppB,Altermann W W.Sensitive solid-phase detection of donor-specific antibodies as an aid highly relevant to improving allograftoutcomes[J].Mol Diagn Ther,2014,18（2）：185-201.

　　[8]Wiwattanathum P,IngsathitA,Thammanichanond D,et al.Significance of HLA antibody detected by PRA-Bead method in kidney transplant outcomes[J].Transplant Proc,2016,48（3）：761-5.

　　[9] Jun K W,Kim M H,Hwang J K,et al.Impact of pretransplant panel-reactive antibody level on renal graft survival in patients with a negative crossmatch and no donor-specific antibody[J].Transplant Proc,2016,48（3）：770-2.

　　[10]Krogstrup N V,Bibby B M,Aulbjerg C,et al.A new method of modelling early plasma creatinine changes predicts 1-year graftfunction after kidney transplantation[J].Scand J Clin Lab Invest,2016,76（4）：319-23.

　　[11]邢利，曲青山，蒋欣，等。肾移植术后早期感染类型分析[J].中华医院感染学杂志，2013,23（12）：2875-7.

　　[12] Li J J.Report:Clinical characteris ticsandt reatment experience report of severe pulmonary infection after renal transplantation[J].PakJPharmSci,2015,28（4）：1559-62.

相关内容